Синтез и физико-химические свойства солей магния с 4Н-пирановыми кислотами
- Авторы: Козин С.В.1,2, Кравцов А.A.1,2, Киндоп В.К.1, Беспалов А.В.1, Иващенко Л.И.1, Назаренко M.A.1, Моисеев А.В.3, Чураков А.В.4, Вашурин А.С.4
-
Учреждения:
- Кубанский государственный университет
- Южный научный центр Российской академии наук
- Кубанский государственный аграрный университет им. И.Т. Трубилина
- Институт общей и неорганической химии им. Н.С. Курнакова Российской академии наук
- Выпуск: Том 70, № 2 (2025)
- Страницы: 191-200
- Раздел: СИНТЕЗ И СВОЙСТВА НЕОРГАНИЧЕСКИХ СОЕДИНЕНИЙ
- URL: https://medbiosci.ru/0044-457X/article/view/289430
- DOI: https://doi.org/10.31857/S0044457X25020065
- EDN: https://elibrary.ru/ICOVAX
- ID: 289430
Цитировать
Аннотация
В результате взаимодействия 4-оксо-4H-пиран-2,6-дикарбоновой (хелидоновой) кислоты с ацетатом магния было получено сокристаллическое соединение – хелидонат магния. Изучение процесса термоокислительной деструкции хелидоната магния показало, что его дегидратация осуществляется в два этапа, а термодеструкция органической части сопровождается ярко выраженными тепловыми эффектами. В структуре хелидоната магния вокруг катиона магния имеется как внутренняя, так и внешняя координационная сфера. Во внутреннюю сферу входят шесть молекул воды, образующие гексааквакатион магния. Внешнюю сферу образуют анионные остатки хелидоновой кислоты, связанные водородными связями с молекулами воды внутренней координационной сферы катиона магния. Структура хелидоната магния кристаллизуется в триклинной сингонии пр. гр. и имеет обширную сеть водородных связей между координированными молекулами воды, анионами кислоты и катионами гексагидрата магния. Сравнительный анализ нейропротекторного действия хелидоната магния и хелидоновой кислоты показал, что оба соединения защищали культивируемые нейроны в модели клеточной ишемии. Данный эффект выражался снижением гибели нейронов при кислородо-глюкозной депривации. При этом хелидонат магния был эффективнее хелидоновой кислоты при тех же концентрациях.
Ключевые слова
Полный текст
ВВЕДЕНИЕ
Препараты магния широко применяются и исследуются в фармакологии в связи с высокой биологической активностью данных катионов [1]. Ионы Mg2+ оказывают антигипертензивное, антиаритмическое, противовоспалительное и антикоагулянтное действия, поэтому применение препаратов магния может быть полезным при профилактике и лечении сердечно-сосудистых заболеваний [2]. Ионы Mg2+ являются естественными блокаторами каналов NMDA-рецепторов, поэтому способны снижать гибель нейронов при эксайтотоксичности [3]. Данные эффекты позволяют рассматривать ионы Mg2+ как потенциальные средства в борьбе с последствиями постинсультных состояний головного мозга. Актуальной задачей фармакологии является поиск новых лигандов, оказывающих синергетическое действие ионов магния. Обнаруженные у хелидоновой кислоты противовоспалительные и нейропротекторные свойства дают основание рассматривать ее как потенциальный лиганд для ионов Mg2+ в качестве новых нейропротекторных средств.
Хелидоновая кислота (4-оксо-4H-пиран-2,6-дикарбоновая кислота, H2Chel), относящаяся к кислотам γ-пиранового (4-оксо-4H-пиранового) ряда, является малой биологически активной молекулой, в отношении которой обнаружен ряд биологических эффектов. H2Chel входит в состав лекарственного растения Chelidonium majus L. и оказывает выраженное противовоспалительное и антигистаминное действие [4]. Установлено, что внутрибрюшинное введение H2Chel предотвращало индуцированную провокацией овальбумином дегрануляцию тучных клеток, а также способствовало снижению количества эозинофилов и уровня IgE в сыворотке крови [5]. При моделировании язвенного колита и аллергического ринита у экспериментальных животных H2Chel уменьшала выброс провоспалительных молекул [6, 7]. Комплексное соединение H2Chel с кальцием – хелидонат кальция – способствовало усилению минерализации внеклеточного матрикса in vitro и формированию эктопической костной ткани in situ [8]. В литературе встречается ограниченное количество работ, посвященных влиянию хелидоновой кислоты на центральную нервную систему. Имеются данные о анксиолитическом эффекте и противовоспалительном действии H2Chel на ткани головного мозга [9]. В отношении родственных хелидоновой кислоте соединений, таких как коменовая, койевая и меконовая, также установлена биологическая активность [10–14].
В литературе представлены данные о кристаллической структуре координационных соединений хелидоновой кислоты с катионами металлов: Mn2+, Ca2+, Be2+, Cu2+ и Cd2+ [15]. В комплексе бериллия с хелидоновой кислотой [Be(H2O)4]2+(C7H2O6)2– катион посредством молекул воды связан восемью водородными связями с молекулами лиганда, образуя трехмерную каркасную структуру. Каждый из ионов в кристалле (N2H6)2+[Ca(C7H2O6)]2(H2O)2]2– лежит на кристаллографической оси второго порядка в пр. гр. P2/c; анионы образуют листы с водородными связями, которые катионы связывают в трехмерный каркас. В тетрагидрате [Mn2(C7H2O6)2(H2O)8] ∙ 4H2O ионы металлов и органические лиганды образуют циклическое центросимметричное звено Mn2(C7H2O6)2, и эти звенья связаны в сложную трехмерную каркасную структуру, содержащую двенадцать независимых водородных связей. Катион меди образует с хелидоновой кислотой комплекс (тетрааква(4-оксо-4H-пиран-2,6-дикарбоксилат) меди) [Cu(C7H2O6)(H2O)4] так, что два независимых иона Cu2+ лежат на центрах инверсии пр. гр. P1; ионы металлов и органические лиганды образуют одномерный координационный полимер, а полимерные цепи связаны в трехмерный каркас, содержащий восемь независимых водородных связей. Не встречаются работы, в которых была бы охарактеризована структура хелидоната магния, при этом кристаллические структуры комената и мальтолата магния представлены в литературе [16, 17].
Целью данной работы являлось осуществление синтеза хелидоната магния, изучение его структуры, физико-химических и нейропротекторных свойств, а также сравнение их со структурой и свойствами комената магния.
ЭКСПЕРИМЕНТАЛЬНАЯ ЧАСТЬ
Для синтеза в качестве исходных соединений использовали коммерческие реактивы Mg(CH3COO)2 · 4H2O (ч. д. а, >99.5%, ХимКрафт) и H2Chel (Sigma-Aldrich).
4-оксо-4H-пиран-2,6-дикарбоновая кислота
ИК-спектр (ν, см–1): 3597, 3473, 3107, 3055, 1722, 1647, 1576, 1408, 1286, 1228, 1122, 1030, 958, 903, 739, 689, 530.
Спектр ЯМР 1Н [D2O, 298 K], (δ, м. д.): 6.97 с. (2H, С–H).
Спектр ЯМР 13С [D2O, 298 K], (δ, м. д.): 179.2 (С14), 160.8 (С11, С17), 153.9 (С12, С16), 118.9 (С13, С15).
Координационное соединение магния
Синтез 4-оксо-4H-пиран-2,6-дикарбоксилата (хелидоната) магния(II) выполняли по следующей методике. Раствор хелидоновой кислоты 0.45 г (2.4 ммоль) в 15 мл воды при температуре 80 ± 2°C смешивали с раствором Mg(CH3COO)2 · · 4H2O 0.26 г (1.2 ммоль) в 5 мл воды. В результате реакционная масса приобретала значение pH 3.0–4.0 и окрашивалась в светло-желтый цвет. Хелидонат магния выделяли из раствора упариванием на ~3/4 от первоначального объема, при этом хелидонат магния начинал кристаллизоваться из горячего раствора. Полученный продукт дополнительно очищали перекристаллизацией из дистиллированной воды. Выход 0.45 г (91%).
ИК-спектр (ν, см–1): 3456, 3116, 3070, 1716, 1637, 1576, 1392, 1331, 1261, 1136, 968, 908, 798, 708, 621, 543.
Спектр ЯМР 1Н [D2O, 298 K], (δ, м. д.): 7.00 с. (2H, С–H).
Спектр ЯМР 13С [D2O, 298 K], (δ, м. д.): 184.4 (С14), 164.1 (С11, С17), 159.0 (С12, С16), 117.2 (С13, С15).
Рентгеноструктурный анализ выполнен на автоматическом дифрактометре Bruker D8 Venture при температуре 100 K с использованием CuKα-излучения (1.54178 Å). Адсорбционная коррекция введена по измерениям интенсивностей эквивалентных отражений (SADABS). Структура решена прямым методом и уточнена полноматричным анизотропным методом наименьших квадратов для всех не водородных атомов (SHELXTL). Все атомы водорода найдены из разностного ряда и уточнены изотропно. Пр. гр. , Fw = 1235.67 г/моль, а = 6.7390(3), b = 12.4844(6), с = 15.5758(8) Å, α = 104.2629(18), β = 100.413(2), γ = 93.441(2)°, V = 1241.58(10) Å3, Z = 1, μ(CuKα) = 1.770 мм–1, Dcalc = 1.653 г/см3, F(000) = 646, область съемки 3.68° ≤ θ ≤ 72.50°; интервалы индексов отражений: –8 ≤ h ≤ 8, –15 ≤ k ≤ 15, –19 ≤ l ≤ 19, число измеренных отражений 54030, число независимых отражений 4883 (Rint = 0.0187), число уточняемых параметров 475. Финальные факторы расходимости по 4643 отражениям с I > 2σ(I): R1 = 0.0241 (wR2 = 0.0636), R-факторы по всем отражениям: R1 = 0.0254 (wR2 = 0.0645); добротность по F2 1.039, Δρmax/Δρmin = 0.337/–0.198 е/Å3. Результаты РСА соединения депонированы в Кембриджском банке структурных данных (CCDC 2385263).
Термогравиметрический анализ проводили на синхронном термическом анализаторе STA-409 PC Luxx (Netzsch, Германия). Испытания осуществляли в окислительной атмосфере (воздух) в алундовых тиглях в условиях программируемого изотермического нагрева с эталоном α-Аl2O3 при скорости нагрева 10 град/мин, диапазон температур 30–1000°С.
ИК-спектры записывали на ИК-Фурье-спектрометре VERTEX 70 (Bruker Corporation, США) в области 4000‒400 см–1 с использованием приставки многократного нарушенного полного внутреннего отражения. Для обработки результатов использовали оригинальное программное обеспечение прибора и программу SpecMan из пакета ACDLabs 10.0. Отнесение частот в ИК-спектрах проводили на основании литературных данных и результатов квантово-химического расчета колебательного спектра фрагмента кристаллической решетки полуэмпирическим методом XTB2 [18]. Для сравнения рассчитанных колебательных частот с экспериментальными использовали стандартный поправочный коэффициент 0.99 [19]. Расчет проводили с использованием программного пакета ORCA 6.0 [20, 21], для визуализации молекулярных колебаний применяли программу ChemCraft 1.8.
Спектры ЯМР регистрировали на импульсном спектрометре JNM-ECA 400 (JEOL, Япония) [400 (1Н) и 101 МГц (13С)]. Стандартные условия (298 K), раствор вещества в D2O. В качестве стандарта использовали тетраметилсилан и остаточные сигналы растворителя. Для обработки результатов использовали программное обеспечение NMRMan из пакета ACDLabs 10.0.
Электронные спектры поглощения фиксировали на спектрофотометре Leki UV 2109 (Финляндия) в кварцевых спектрофотометрических кюветах c толщиной поглощающего слоя 10 мм в диапазоне 190–1100 нм. Обработку спектров проводили при помощи оригинального программного обеспечения прибора LekiScanPro.
Нейропротекторный потенциал был исследован на культуре нейронов мозжечка, полученных от восьмидневных крысят линии Wistar методом феpментно-меxаничеcкой диссоциации [22]. Культуры выращивали в 96-луночныx планшетах, покрытых поли-L-лизином, в культуpальной среде, содержащей 10% эмбриональной телячьей сыворотки, 2 мМ глутамина, 10 мМ буфеpа НEPES, 25 мМ KCl. В каждую лунку добавляли 0.1 мл клеточной суспензии до конечной плотности 3–5 × 103 клеток/мм2. Клетки культивировали в инкубаторе CO2 при 36°C и относительной влажности 98% в течение 7 дней перед экспериментом.
В экспериментах использовали две инкубационные среды (ИС). Первая среда состояла (в мМ): NaCl – 154, KCl – 25, CaCl2 – 2.3, MgCl2 – 1, NaHCO3 – 3.6, Na2HPO4 – 0.35, HEPES – 10, глюкоза – 5.6 при pH 7.3. Вторая среда, используемая для моделирования депривации, была без глюкозы и имела тот же солевой состав. Кислородно-глюкозную депривацию (КГД) моделировали, помещая культуры в аргоновую атмосферу на 45 мин вместе с безглюкозным солевым раствором. Через 45 мин культуры промывали и возвращали в солевой раствор с глюкозой и добавлением хелидоновой кислоты и хелидоната магния в концентрациях 5 и 50 мкМ. Через сутки культуры промывали от вещества и проводили измерения.
Для определения уровня гибели нейронов в культурах использовали йодид пропидия (PI), который добавляли к культурам в концентрации 5 мкг/мл на 15 мин. После этого культуры трижды промывали ИС и измеряли флуоресценцию при длине волны возбуждения 535 нм и длине волны испускания 625 нм на многофункциональном микропланшетном ридере Filter Max F5 (Molecular Devices, США). Результаты измерений представляли в процентах. За 100% принимали интенсивность флуоресценции контрольных культур. Для анализа использовали данные, полученные в трех–пяти независимых экспериментах.
Эксперименты с животными проводили в соответствии c требованиями Приказа МЗ PФ № 267 от 19 июня 2003 года “Об утверждении правил лабораторной практики”, Правил лабораторной практики (GLP), Хельсинской декларации (2000) и Директив Европейского cообщеcтва 86/609EEC.
Статистическую обработку полученных данных проводили с использованием программы STATISTICA 10. Достоверность различий средних значений, найденных между группами, статистически оценивали с помощью непараметрического U-критерия (Манна–Уитни), различие считалось достоверным при p < 0.05. Данные представлены в виде M ± m, где М – среднее значение, m – стандартная ошибка среднего.
РЕЗУЛЬТАТЫ И ОБСУЖДЕНИЕ
Ранее нами был описан синтез и различные физико-химические свойства, а также биологическая активность комената магния [16, 23], имеющего близкие структурные характеристики, поэтому в рамках данной работы был произведен сравнительный анализ структуры и свойств магниевых солей хелидоновой и коменовой кислот.
Синтез комената магния, проведенный ранее, осуществлен по аналогичной методике и протекал с несколько меньшим выходом (85% по сравнению с 91% в данной работе). В обеих реакциях осуществляли достаточно строгий контроль температурного режима (80 ± 2°C). Следует обратить внимание на различие pH в реакционных средах. При синтезе хелидоната магния pH 3.0–4.0, тогда как при синтезе комената магния реакционная масса имела значение рН, близкое к 5.5, что обусловлено более слабыми кислотными свойствами коменовой кислоты по сравнению с хелидоновой. В целом применяемая методика достаточно универсальна и может применяться для синтеза соединений кислот 4-оксо-4H-пиранового ряда с различными металлами.
При анализе термического поведения и гидратного состава хелидоната магния (рис. 1) было обнаружено, что термолиз данного соединения включает нескольких стадий. В диапазоне 100–200°С на кривой ДСК отмечается эндоэффект (–35.55 мкВּ с/мг, 133.2°С) с потерей массы в 12.12%, вызванный частичной дегидратацией образца. Данная потеря массы соответствует отрыву 9 молекул воды – всех 6 молекул, не входящих в гидратные оболочки магния и по одной молекуле из каждого гексагидрата магния, при этом, вероятно, координационное положение удаленной молекулы воды в катионе магния занимает карбоксилатная группа лиганда. Дальнейшее повышение температуры до 240°С сопровождается еще одним эндоэффектом (–42.36 мкВּ с/мг, 229.3°С) с потерей массы в 7.86 %, который может быть вызван декарбоксилированием протонированных карбоксильных групп двух ионов HChel–. Последующее уменьшение массы на 22.76% в диапазоне 240–300°С соответствует отрыву оставшихся 15 молекул воды, входящих в гидратные оболочки Mg2+, и, таким образом, полной дегидратации образца. При нагревании в диапазоне от 300 до 550°С наблюдаются два ярко выраженных экзоэффекта (220.9 мкВּ с/мг, 343.0°С и 1356 мкВּ с/мг, 490.9°С) с потерей массы в 17.48 и 30.07% соответственно, которые вызваны термодеструкцией и последующим выгоранием молекул лиганда. Конечным продуктом термолиза является оксид магния. Следует отметить, что термическое поведение полученного хелидоната магния несколько отличается от полученного ранее комената магния. Так, полная дегидратация комената реализуется в одну ступень – в диапазоне 100–200°С отщепляются все восемь молекул воды (шесть входящих в гидратную оболочку магния и две кристаллизационные), в то время как дегидратация хелидоната происходит в два этапа. При этом температуры эндоэффектов дегидратации оказываются весьма схожими (137.8°С у комената и 133.2°С у хелидоната). Обобщенные результаты, полученные при определении состава хелидоната магния, представлены в табл. 1.
Рис. 1. Термогравиметрические кривые [Mg(H2O)6]3 · (Chel)2(HChel)2 · 6H2O.
Таблица 1. Сопоставление данных физико-химического анализа для установления состава хелидоната магния
Найдено, мас. % | Вычислено, мас. % | ||
термогравиметрия | комплексонометрическое титрование | ||
Mg | 5.85 | 5.57 | 5.90 |
HHel– | 32.53 | – | 29.64 |
Hel2– | 26.74 | – | 29.47 |
H2O | 34.88 | – | 34.96 |
Дальнейшее исследование структурных характеристик хелидоната магния было проведено с помощью ИК- и ЯМР-спектрометрии. Для интерпретации ИК-спектра хелидоновой кислоты использовали литературные данные [24], следует отметить, что колебательные спектры для соединений с хелидонат-анионами изучены в значительно меньшей степени. Для корректного отнесения характеристических полос в ИК-спектрах хелидоната и комената магния был выполнен квантово-химический расчет колебаний фрагментов кристаллической решетки при помощи полуэмпирического метода GFN2-XTB. В целом, хотя полуэмпирическая расчетная схема GFN2-XTB уступает в надежности полноценным DFT-методам, ее использование может быть полезным для интерпретации ИК-спектров в тех случаях, когда объект исследования содержит большое количество атомов (например, фрагменты кристаллических решеток в данной работе) и для его расчета высокоуровневыми квантово-химическими методами требуются слишком большие временные затраты.
Схема 1. Получение сокристаллического соединения – хелидоната магния.
В ИК-спектре хелидоната магния (табл. 2) по сравнению со спектром исходной кислоты отмечается общее снижение интенсивности поглощения в области 2200–3000 см–1, что связано с разрывом прочных межмолекулярных водородных связей в димерах хелидоновой кислоты и последующим депротонированием большинства карбоксильных групп. В то же время наблюдается повышение интенсивности поглощения в области валентных колебаний ν(O–H) 3100–3400 см–1, это связано с присутствием большого количества кристаллизационной воды в структуре комплекса, что также подтверждается общим повышением интенсивности поглощения в области 1600–1700 см–1, обусловленным деформационными колебаниями δ(H2O). Также в ИК-спектре комплекса интенсивность полосы валентных колебаний COOH-группы существенно снижается, но появляются две полосы колебаний карбоксилат-аниона: νas(COO–) при 1576 см–1 и νs(COO–) при 1392 см–1, при этом разница между ними составляет 184 см–1, что, согласно литературным данным, может указывать на наличие ионизированной карбоксильной группы, связанной только водородными связями с молекулами воды, но не координационной связью с ионом металла [24]. Таким образом, данные ИК-спектроскопии полностью согласуются с результатами рентгеноструктурного анализа и электронной спектроскопии поглощения. Для удобства сравнения спектральных характеристик хелидоната магния с полученным ранее коменатом магния основные полосы в ИК-спектре комената магния [25] были помещены в табл. 2. Как можно заметить, разница в положении максимумов симметричных и асимметричных колебаний карбоксилат-аниона в спектре комената магния (249 см–1) оказывается больше, чем в случае хелидоната магния (184 см–1), что указывает на явно выраженную асимметрию в координации карбоксилатной группы и склонность к монодентатному связыванию.
Таблица 2. Характеристические частоты и их отнесения в ИК-спектрах лиганда (H2Chel) (хелидоновой кислоты), хелидоната магния(I) и комената магния(II), см−1
Соединение | ν(O–H) | ν(С–H) | ν(C=O) | ν(COOH) | νas (COO –) | νs (COO –) | Δν = νas – νs | ν(C–O) | ν(Mg–O) |
H2Сhel | 3597 3473 | 3107 3056 | 1722 | 1647 | – | – | – | 1228 | – |
I (эксп.) | 3456 | 3117 3070 | 1716 | 1637 | 1576 | 1392 | 184 | 1261 | 418 |
I (расч.) | 3457 | 3101 3062 | 1742 | 1669 | 1604 | 1375 | 212 | 1156 | 376 |
II (эксп.) | 3500 | 3093 | – | 1628 | 1601 | 1352 | 249 | 1213 1157 | 517 |
II (расч.) | 3485 | 3070 | – | 1631 | 1658 | 1362 | 296 | 1226 1179 | 382 |
Исследование ЯМР на ядрах 1Н дало следующие результаты. Наблюдаемое смещение сигнала винильных протонов в слабое поле в спектрах растворов хелидоната магния по сравнению с исходной кислотой является достаточно слабым (0.03 м.д.), при этом в спектре ранее синтезированного комената магния сигнал винильного протона смещается (0.09 м.д.) уже в сильное поле по сравнению с исходной коменовой кислотой. Наблюдаемые изменения спектров ЯМР 1Н являются крайне незначительными и говорят о том, что спектры исходных кислот (хелидоновой и коменовой) практически идентичны спектрам их магниевых солей.
Изучение поглощения оптического излучения в УФ-диапазоне растворов хелидоновой кислоты и хелидоната магния показало соответствующие отличия. В УФ-спектре хелидоновой кислоты наблюдали две достаточно интенсивные полосы при 225 и 273 нм, вызванные поглощением сопряженных систем, включающих хромофорные группы. Интенсивность этих полос незначительно уменьшилась в случае комплекса хелидоновой кислоты с Mg2+ (табл. 3), в то же время положения максимумов остались неизменными. Некоторое уменьшение интенсивности может быть связано с координацией хелидоновой кислоты с катионами Mg2+, но, учитывая крайне незначительные изменения в УФ-спектре, а также данные РСА для кристаллического состояния, можно сделать вывод о том, что хелидоновая кислота связывается с Mg2+ не непосредственно, а через молекулы воды гидратной оболочки посредством образования водородных связей.
Таблица 3. Параметры полос поглощения в электронном спектре хелидоната магния
λmax, нм | Сопряженная система | Переход | А, отн. ед. |
225 | –C(O)– | n → π* | 1.496 |
274 | –СOO– | n → π* | 1.301 |
Таблица 4. Кристаллографические данные, параметры эксперимента и уточнения структуры [Mg(H2O)6]3 · (Chel)2(HChel)2 · 6H2O
Параметр | Значение |
Брутто-формула | C28H58Mg3O48 |
Fw | 1235.64 |
Температура, K | 100 |
Размер кристалла, мм | 0.20 × 0.15 × 0.10 |
Излучение | CuKα (λ = 1.54178) |
Сингония | триклинная |
Пр. гр. | P¯1 |
a, Å | 6.7390(3) |
b, Å | 12.4844(6) |
c, Å | 15.5758(8) |
α, град | 104.2629(18) |
β, град | 100.413(2) |
γ, град | 93.441(2) |
V, Å3 | 1241.58(10) |
Z | 1 |
ρ(выч.), г/см3 | 1.653 |
μ, мм–1 | 1.770 |
F(000) | 646 |
Область углов съемки θ, град | 3.675–72.497 |
Диапазоны h, k, l | –8 ≤ h ≤ 8, –15≤ k ≤ 15, –19 ≤ l ≤ 19 |
Число измеренных рефлексов | 54030 |
Число независимых рефлексов (Rint, Rσ) | 4883 (0.0187, 0.0381) |
Данные/ограничения/параметры | 4883/0/475 |
Добротность по F2 | 1.039 |
R-фактор (I > 2σ(I)) | R1 = 0.0241, wR2 = 0.0636 |
R-фактор (все данные) | R1 = 0.0254, wR2 = 0.0645 |
Δρmax/Δρmin, e Å–3 | 0.337/–0.198 |
В случае комената магния изменения в его УФ-спектре по сравнению со спектром исходного лиганда оказываются более существенными (наблюдается как значительное уменьшение интенсивности полос поглощения, так и батохромный сдвиг полосы n → π*-перехода карбоксильной группы), что позволяет сделать вывод о более высокой степени координации коменовой кислоты с магнием по сравнению с хелидоновой в растворе.
Проведенный РСА хелидоната магния показал следующие результаты. Кристаллографически независимая область содержит два катиона [Mg(H2O)6]2+ (один из которых лежит в общем положении, а другой – на центре инверсии), анионы Chel2– и HChel–, а также три внешнесферные молекулы воды (рис. 2). Анионы хелидоновой кислоты плоские в пределах 0.22 Å и связаны между собой очень прочной почти линейной водородной связью –CO2H…O2C– с расстоянием O(24)…O(14), составляющим 2.489(1) Å. Оба атома магния имеют обычное для гексааквагидратов слегка искаженное октаэдрическое окружение с длинами связей Mg–O в интервале 2.0188(9)–2.0966(8) Å и цис-углами OMgO, лежащими в переделах 82.72(4)°–94.63(4)°.

Рис. 2. Независимая область в структуре хелидоната магния. Тепловые эллипсоиды показаны с 50%-ной вероятностью. Водородные связи обозначены пунктирными линиями.
В структуре все молекулы воды (как внутри-, так и внешнесферные) выступают как доноры двух водородных связей либо по отношению к другим молекулам Н2О, либо к атомам кислорода органических анионов. Длины этих Н2О…О-взаимодействий соответствуют слабым и средней силы Н-связям (2.667(1) –3.129(1) Å). Три внешнесферных молекулы воды О(31), О(32) и О(33), кроме этого, образуют еще и акцепторные водородные связи с внутрисферными молекулами воды. В свою очередь, девять независимых внутрисферных водных лиганда определенно делятся на две группы: пирамидализованные молекулы О(4) и О(9), образующие три водородные связи (две донорные и одну акцепторную) и характеризующиеся минимальной суммой валентных углов вокруг атомов кислорода (336° и 340°) и наибольшими расстояниями Mg–O (2.0945(9) и 2.0966(8) Å) и семью уплощенными остальными O(1), O(2), O(3), O(5), O(6), O(7) и O(8), образующими только две донорные Н-связи с суммами валентных углов 344°–360° и расстояниями Mg–O < 2.0759(9) Å. В кристалле наблюдается сложная трехмерная упаковка частиц за счет разветвленной сети многочисленных водородных связей. Помимо этого, в кристалле имеются π-стекинг взаимодействия между соседними центросимметрично связанными моноанионами HChel–, характеризующиеся межплоскостными расстояниями 3.23 и 3.24 Å и кратчайшим межатомным расстоянием О(26)–С(23), равным 3.26 Å.
Установленная структура хелидоната магния хорошо согласуется с литературными данными. В литературе описаны структуры некоторых комплексных соединений магния с биоактивными лигандами [25]. Известно, что лиганды, взаимодействующие с катионами магния, могут находиться как во внутренней координационной сфере, так и во внешней. В первом случае такая координация является внутрисферной и наблюдается в структуре мандалата, формиата и глицината магния. Для хелидоната и комената магния характерна внешнесферная координация с магнием, когда во внутренней координационной сфере катиона располагаются шесть молекул воды, а лиганды находятся во внешней сфере. Подобная координация также наблюдается в структуре оротата, антранилата и малеата магния.
Изучение защитного эффекта исследуемых веществ на нейроны мозжечка при действии кислородо-глюкозной депривации в экспериментах in vitro показало следующие отличия. В данном эксперименте о развитии защитного эффекта судили по снижению интенсивности флуоресценции PI. Поскольку PI связывается с ДНК только мертвых клеток, то интенсивность его флуоресценции пропорциональна количеству погибших клеток. Рис. 3 демонстрирует, что кислородо-глюкозная депривация приводила к возрастанию уровня гибели нейронов, что выражалось увеличением интенсивности флуоресценция на 29% (p < 0.05) по сравнению с интактными клетками. Добавление в культуру клеток хелидоната магния и хелидоновой кислоты в концентрациях 50 и 5 мкМ после КГД приводило к снижению гибели клеток головного мозга, что выражалось снижением интенсивности используемого красителя. Так, при добавлении хелидоната магния в концентрации 50 мкМ флуоресценция PI возросла на 11% (p < 0.05), тогда как при концентрации 5 мкМ интенсивность флуоресцентного красителя была на уровне интактных клеток (p < 0.05). Интенсивность свечения PI, следовательно, и гибель клеток при добавлении хелидоновой кислоты при концентрации 50 и 5 мкМ увеличилась на 20 и 15% по сравнению с интактными клетками (p < 0.05). Действие хелидоната магния при концентрациях 50 и 5 мкМ было на 9 и 15% выше, чем хелидоновой кислоты при соответствующих концентрациях. Развитие гипоксического состояния в используемой нами модели клеточной ишемии приводит к запуску ряда деструктивных процессов в клетках головного мозга. Одними из таких патологических процессов являются окислительный стресс, развитие воспалительного процесса и гиперстимуляция глутаматных NMDA-рецепторов. Развитие защитного эффекта на фоне применения хелидоновой кислоты связано с ее антиоксидантными и противовоспалительными свойствами [4–7, 9, 26], а более высокий защитный потенциал хелидоната магния по сравнению с хелидоновой кислотой, вероятнее всего, связан с развитием синергического эффекта, обусловленный одновременным физиологическим действием аниона хелидоновой кислоты и катиона магния. Магний является естественным блокатором глутаматных NMDA-рецепторов и их блокирование на ранних стадиях развития гипоксии/ишемии и способствует более выраженному нейропротекторному эффекту [3]. Данные предположения основываются на имеющихся литературных данных и требуют более детальных экспериментальных исследований, в том числе изучения устойчивости хелидоната магния в водных растворах при физиологических рН.
Рис. 3. Влияние КГД на интенсивность флуоресценции пропидия иодида в культуре нейронов мозжечка при действии а) хелидоната магния (Хелид. Mg), б) хелидоновой кислоты (ХК). Данные представлены M ± m; * – р < 0.05 по отношению к интактным клеткам; # – р < 0.05 по отношению к клеткам, подвергшимся КГД; $ – р < 0.05 по отношению к хелидоновой кислоте.
ЗАКЛЮЧЕНИЕ
Таким образом, в результате проведенных исследований физико-химических свойств и структуры хелидоната магния было выявлено различие термического поведения хелидоната и комената магия, установлены схожие структурные особенности двух этих соединений, а именно наличие внешнесферной координации с гексааквакатионом магния. На основании полученных структурных данных можно сделать вывод, что хелидонат магния представляет собой сокристаллическое соединение гексагидрата магния с моно- и дианиоными формами хелидоновой кислоты.
Полученные в работе структурные данные и установленный защитный эффект на нейроны головного мозга нового полученного соединения – сокристалла магния с хелидоновой кислотой – дают основания для дальнейшего изучения его нейропротекторной активности в экспериментах in vitro и in vivo, а также предпосылки для дальнейшего синтеза и исследования координационных соединений хелидоновой кислоты с другими биогенными металлами.
КОНФЛИКТ ИНТЕРЕСОВ
Авторы заявляют, что у них нет конфликта интересов.
БЛАГОДАРНОСТИ
Авторы выражают благодарность Центру коллективного пользования “Физические методы исследования веществ и материалов” ФГБУН Институт общей и неорганической химии им. Н.С. Курнакова.
ФИНАНСИРОВАНИЕ
Работа выполнена при финансовой поддержке Российского научного фонда и Кубанского научного фонда № 24-23-20060 “Комплексы магния с 4Н-пирановыми кислотами:синтез, исследование структуры и устойчивости, нейропротекторные свойства”.
Об авторах
С. В. Козин
Кубанский государственный университет; Южный научный центр Российской академии наук
Автор, ответственный за переписку.
Email: kozinsv85@mail.ru
Лаборатория проблем распространения стабильных изотопов в живых системах
Россия, 350040, Краснодар; 344006, Ростов-на-ДонуА. A. Кравцов
Кубанский государственный университет; Южный научный центр Российской академии наук
Email: kozinsv85@mail.ru
Лаборатория проблем распространения стабильных изотопов в живых системах
Россия, 350040, Краснодар; 344006, Ростов-на-ДонуВ. К. Киндоп
Кубанский государственный университет
Email: kozinsv85@mail.ru
Россия, 350040, Краснодар
А. В. Беспалов
Кубанский государственный университет
Email: kozinsv85@mail.ru
Россия, 350040, Краснодар
Л. И. Иващенко
Кубанский государственный университет
Email: kozinsv85@mail.ru
Россия, 350040, Краснодар
M. A. Назаренко
Кубанский государственный университет
Email: kozinsv85@mail.ru
Россия, 350040, Краснодар
А. В. Моисеев
Кубанский государственный аграрный университет им. И.Т. Трубилина
Email: kozinsv85@mail.ru
Россия, 350044, Краснодар
А. В. Чураков
Институт общей и неорганической химии им. Н.С. Курнакова Российской академии наук
Email: kozinsv85@mail.ru
Россия, 119991, Москва
А. С. Вашурин
Институт общей и неорганической химии им. Н.С. Курнакова Российской академии наук
Email: kozinsv85@mail.ru
Россия, 119991, Москва
Список литературы
- Walter a E.R.H., Hogg C., Parker D., Williams J.A. G. // Coord. Chem. Rev. 2021. V. 428. P. 213622. https://doi.org/10.1016/j.ccr.2020.213622
- de Baaij J.H., Hoenderop J.G., Bindels R.J. // Physiol.Rev. 2015. V. 95. P. 1. https://doi.org/10.1152/physrev.00012.2014. PMID: 25540137
- Louis J. M., Randis T. M. // JAMA. 2023. V. 330. P. 597. https://doi.org/10.1001/jama.2023.10673.
- Kim S. J., Kim D.S., Li Sh. et al. // Biol. Chem. 2023. V. 66. P. 12. https://doi.org/10.1186/s13765-022-00763-1
- Singh D.K., Gulati K., Ray A. // Int. Immunopharmacol. 2016. V. 40. P. 229. https://doi.org/10.1016/j.intimp.2016.08.009
- Oh H.A., Kim H.M., Jeong H.J. // Int. Immunopharmacol. 2011. V. 11. P. 39. https://doi.org/10.1016/j.intimp.2010.10.002
- Kim D.S., Kim S.J., Kim M.C. et al. // Biol. Pharm. Bull. 2012. V. 35. P. 666. https://doi.org/10.1248/bpb.35.666
- Avdeeva E., Porokhova E., Khlusov I. et al. // Pharmaceuticals. 2021. V. 146. P. 579. https://doi.org/10.3390/ph14060579
- Jeong H.J., Yang S.Y., Kim H.Y. et al. // Exp. Biol. Med. 2016. V. 241. P. 1559. https://doi.org/10.1177/1535370216642044
- Kozin S.V., Kravtsov A.A., Kravchenko S.V. et al. // Bull. Exp. Biol. Med. 2021. V. 171. P. 619. https://doi.org/10.1007/s10517-021-05281-6
- Rogachevskii I.V., Plakhova V.B., Penniyaynen V.A. et al. // Can. J. Physiol. Pharmacol. 2022. V. 100. P. 43. https://doi.org/10.1139/cjpp-2021-0286
- Kravtsov A.A., Shurygin A.Y., Skorokhod N.S., Khaspekov L.G. // Bull. Exp. Biol. Med. 2011. V. 150. P. 436. https://doi.org/10.1007/s10517-011-1162-x
- Shurygina L.V., Zlishcheva E.I, Kravtsov A.A., Kozin S.V. // Bull. Exp. Biol. Med. 2021. V.171. P. 338. https://doi.org/10.1007/s10517-021-05223-2
- Khan A., Park T.J., Ikram M. et al. // Mol. Neurobiol. 2021. V.58. P. 5127. https://doi.org/10.1007/s12035-021-02460-4
- Yasodha V., Govindarajan S., Low J.N., Glidewell C. // Acta Crystallogr C. 2007. V. 63. P. 207. https://doi.org/10.1107/S010827010701459X
- Ivashchenko L.I., Kozin S.V., Vasileva L.V. et al. // Russ. J. Coord. Chem. 2023. V. 49. P. 437. https://doi.org/10.31857/S0132344X22600412
- Case D.R., Gonzalez R., Zubieta J., Doyle R.P. // ACS Omega. 2021. V. 6. P. 29713. https://doi.org/10.1021/acsomega.1c04104
- Bannwarth C., Ehlert S., Grimme S. // J. Chem. Theory Comput. 2019. V. 15. P. 1652. https://doi.org/10.1021/acs.jctc.8b01176
- Pracht P., Grant D.F., Grimme S. // J. Chem. Theory Comput. 2020. V. 16. P. 7044. https://doi.org/10.1021/acs.jctc.0c00877
- Neese F. // WIREs Comput. Mol. Sci. 2011. V. 2. P. 73. https://doi.org/10.1002/wcms.81
- Neese F. // WIREs Comput. Mol. Sci. 2022. V. 12:c1606. P. 1. https://doi.org/10.1002/wcms.1606
- Kozin S., Kravtsov A., Ivashchenko L. et al. // Int. J. Mol. Sci. 2024. V. 25. P. 286. https://doi.org/10.3390/ijms25010286
- Kravtsov A., Kozin S., Basov A. et al. // Molecules. 2022. V. 27. P. 243. https://doi.org/10.3390/molecules27010243
- Malaganvi S.S., Tonannavar (Yenagi) J., Tonannavar J. // Heliyon. 2019. V. 5. P. 1. https://doi.org/10.1016/j.heliyon.2019.e01586
- Case D.R., Zubieta J., P Doyle R. // Molecules. 2020. V. 25. P. 3172. https://doi.org/10.3390/molecules25143172
- Khairnar S.I., Kulkarni Y.A., Singh K. // Rev Port Cardiol. 2024. V. 30. https://doi.org/10.1016/j.repc.2024.06.003.
Дополнительные файлы





