Получение рекомбинантных фаговых антител, специфичных к гентамицину, и их применение в дот-иммуноанализе

Обложка

Цитировать

Полный текст

Открытый доступ Открытый доступ
Доступ закрыт Доступ предоставлен
Доступ закрыт Только для подписчиков

Аннотация

Показана перспективность применения технологии фагового дисплея для получения антигентамициновых антител. Антигентамициновые рекомбинантные антитела впервые получены с использованием овечьей фаговой библиотеки (Griffin.1, UK). Контроль взаимодействия полученных фаговых антител с гентамицином проводили с помощью спектроскопии кругового дихроизма (КД). Показано, что взаимодействие антигентамициновых фаговых антител с соответствующим антибиотиком сопровождалось появлением в спектрах КД характеристичного экситонного дублета: положительного пика при ~233 нм и более интенсивного отрицательного пика с максимумом ~240 нм. Впервые показана возможность индикации гентамицина с помощью тест-системы на основе метода дот-иммуноанализа и антигентамициновых рекомбинантных антител в водных растворах. Нижний предел детекции антибиотика составлял – 0.5 мкг/мл. Методом дот-иммуноанализа установлено, что антигентамициновые фаговые антитела не взаимодействовали с ампициллином и тетрациклином, но взаимодействовали с канамицином (нижний предел детекции – 1 мкг /мл). Результаты являются перспективными для дальнейшего развития методов определения гентамицина с помощью рекомбинантных фаговых антител.

Об авторах

О. И. Гулий

Институт биохимии и физиологии растений и микроорганизмов, Федеральный исследовательский центр “Саратовский научный центр РАН”

Email: guliy_olga@mail.ru
Саратов, 410049 Россия

Д. С. Чумаков

Институт биохимии и физиологии растений и микроорганизмов, Федеральный исследовательский центр “Саратовский научный центр РАН”

Email: guliy_olga@mail.ru
Саратов, 410049 Россия

В. С. Гринёв

Институт биохимии и физиологии растений и микроорганизмов, Федеральный исследовательский центр “Саратовский научный центр РАН”; Саратовский национальный исследовательский государственный университет имени Н.Г. Чернышевского

Email: guliy_olga@mail.ru
Саратов, 410049 Россия; Саратов, 410012 Россия

О. А. Караваева

Институт биохимии и физиологии растений и микроорганизмов, Федеральный исследовательский центр “Саратовский научный центр РАН”

Автор, ответственный за переписку.
Email: guliy_olga@mail.ru
Саратов, 410049 Россия

Список литературы

  1. Dawadi S., Thapa R., Modi B., Bhandari S., Timilsi- na A.P.; Yadav R.P. et al. // Processes 2021. V. 9. № 9. 1500. https :// doi . org / 10.3390/pr9091500
  2. Larsson D.G. // Ups. J. Med. Sci. 2014. V. 119. № 2. P. 108–1 12. https :// doi . org / 10.3109/03009734.2014.896438
  3. Sadrolhosseini A.R., Hamidi S.M., Mazhdi Y. // Measurement. 2025. V. 239. 115412. https :// doi . org / 10.1016/j.measurement.2024.115412
  4. Sales of Veterinary Antimicrobial Agents in 31 European Countries in 2022' (EMA/299538/2023). Luxembourg: Publications Office of the European Union, 2023. https :// doi.org/10.2809/895656
  5. Riviere J.E., Spoo J.W. In: Veterinary Pharmacology and Therapeutics, / Ed. H.R. Adams. Iowa State University Press, 2001. P. 841–867.
  6. Robert F.W.M., Melanie S.J. // Aust. Prescr. 2010. V. 33. P. 134– 135. https :// doi . org / 10.18773/austprescr.2010.062
  7. Gehring R., Haskell S.R., Payne M.A. , Craigmill A.L., Webb A.I., Riviere J.E. // J. Am. Vet. Med. A. 2005. V. 227. P. 63–66. https :// doi . org / 10.2460/javma.2005.227.63
  8. Hayward R.S., Harding J., Molloy R., Land L., Longcroft-Neal K., Moore D., Ross J.D.C. // Br. Clin Pharmacol. 2018. V. 84. № 2. P. 223–238. https :// doi . org / 10.1111/bcp.13439
  9. LeBrun M., Grenier L., Gourde P., Bergeron M.G., Labrecque G. // Antimicrob . Agents Chemother. 1999. V. 43. № 5. P. 1020–1026. https :// doi . org / 10.1128/AAC.43.5.1020
  10. Zhang S., Geng Y., Ye N., Xiang Y . // Microchem. J. 2020. V. 158. 105190 . https :// doi . org / 10.1016/j.microc.2020.105190
  11. Segura P.A., François M., Gagnon C., Sauvé S. // Environ. Health Perspect. 2009. V. 117. № 5. P. 675–684. https :// doi.org/10.1289/ehp.11776
  12. Deng W., Wang D., Dai P., Hong Y., Xiong J., Duan L. et al. // Microchem. J. 2024. V. 197. 109706. https :// doi.org/10.1016/j.microc.2023.109706
  13. Dai P., Zhang Y., Hong Y., Xiong J., Du H., Duan L. et al. // Food Chem. 2023. V. 400. 134067. https :// doi . org / 10.1016/j.foodchem.2022.134067
  14. Jin Y., Jang J.W., Han C.H., Lee M.H. // J. Agric. Food Chem. 2005. V. 53 . № 20. P. 7639–7643. https :// doi . org / 10.1021/jf050484o
  15. Ramalingam S., Collier C.M., Singh A. // Biosensors 2021. V. 11. 29. https :// doi . org / 10.3390/bios11020029
  16. Burç M., Duran S.T., Güng ör Ö., Köytepe S. // Electroanalysis 2022. V. 34. № 7. P. 1212–1226. https :// doi . org / 10.1002/elan.202100630
  17. Guo X., Guo Y. , Chen X. // Int. J. Mol. Sci. 2024. V. 25. № 4. 2143. https :// doi . org / 10.3390/ijms25042143
  18. Li K.W., Yen Y.K. // Biosens Bioelectron. 2019. V. 130. P. 420–426. https :// doi.org/ 10.1016/j.bios.2018.09.014
  19. Guliy O.I., Zaitsev B.D., Bo rodina I.A. In: Nanobioanalytical Approaches to Medical Diagnostics. / Eds: P.K. Maurya, P. Chandra Elsevier Ltd. Woodhead Publishing, 2022. Chapter 5. Р . 143 –177. ISBN 978-0-323-85147-3. https :// doi . org / 10.1016/B978-0-323-85147-3.00004-9
  20. G uliy O.I., Zaitsev B.D., Borodina I.A. // Sensors. 2023. V. 23. 6292. https :// doi.org/10.3390/s23146292
  21. Bashir S., Paeshuyse J. // Antibodies. 2020. V. 9. 21. https :// doi. org/10.3390/antib9020021
  22. Guliy O.I., Evstigneeva S.S., Dykman L.A. // Appl. Biochem. Microbiol. 2022. V. 58. Suppl. 1. P. S32–S46. https :// doi . org / 10.1134/S0003683822100076
  23. Moreira G.M.S.G., Gronow S., Dübel S., Mendonça M., Moreira Â.N. , Conceição F.R. et al. // Front. Public Health. 2022. V. 10. 712657. https :// doi . org / 10.3389/fpubh.2022.712657
  24. Huang J.X., Bishop-Hurley S.L., Cooper M.A. // Antimicrob. Agents Chemother. 2012. V. 56 . № 9. P. 4569–4582. https :// doi . org / 10.1128/AAC.00567-12
  25. Roth K.D.R., Wenzel E.V., Ruschig M., Steinke S., Langreder N., Heine P.A. et al. // Front. Cell. Infect. Microbiol. 2021. V. 11. 697876. https :// doi.org/10.3389/fcimb.2021.697876
  26. Kulkarni A., Mochnáčová E., Majerova P., C ̌urlı́k J., Bhide K., Mertinková P. et al. // Front. Mol. Biosci. 2020. V. 7. 573281. https :// doi . org / 10.3389/fmolb.2020.573281
  27. Nian S., Wu T., Ye Y., Wang X., Xu W., Yuan Q. // BMC Immunol. 2016. V. 17. P. 8. https :// doi.org/10.1186/s12865-016-0146-z
  28. Salem R., El-Kholy A.A., Ibrahim M. // Virology 2019. V. 533. P. 145–154. https :// doi. org/10.1016/j.virol.2019.05.012
  29. Guliy O.I., Evstigneeva S.S., Khanadeev V.A., Dyk-man, L.A. // Biosensors 2023. V. 13. 640. https :// doi . org / 10.3390/ bios13060640
  30. Petrenko V.A., Gillespie J.W., De Plano L.M., Shok- hen M.A. // Viruses. 2022. V. 14. 384. https://doi.org/10.3390/v14020384
  31. Sadraeian M., Maleki R., Moraghebi M., Bahrami A. // Molecules. 2024. V. 29. 3002. https :// doi . org / 10.3390/molecules29133002
  32. Guliy O.I., Evstigneeva S.S., Dykman L.A. // Biosens. Bioelectron . 2023. V. 222. P. 114909. https :// doi.org/ 10.1016/j.bios.2022.114909
  33. Staroverov S.A., Volkov A.A., Fomin A.S., Laska- vuy V.N., Mezhennyy P.V., Kozlov S.V. et al. // J. Immunoassay Immunochem. 2015. V. 36. P. 100–110. https :// doi . org / 10.1080/15321819.2014.899257
  34. Petrenko V.A. // Viruses 2024. V. 16. 968. https :// doi . org /10.3390/ v 16060968
  35. Guliy O . I ., Alsowaidi A . K . M ., Fomin A . S ., Gaba- lov K . P ., Staroverov S . A ., Karavaeva O . A . // Appl . Biochem . Microbiol . 2022. V . 58. № 5. P. 646–651. https :// doi.org/10.1134/S0003683822050088
  36. Guliy O.I., Evstigneeva S.S., Staroverov S.A., Fomin A.S., Karavaeva O. A. // Appl. Biochem. Microbiol. 2023. V. 59. № 5. P. 716–722. https :// doi.org/ 10.1134/S0003683823050071
  37. Charlton, K.A., Moyle, S., Porter, A.J.R., Harris, W.J. // J. Immunol. 2000 V. 164. P. 6221–6229. https :// doi.org/10.4049/jimmunol.164.12.6221
  38. Wei Q., Zhao Y., Du B., Wu D., Li H., Yang M. // Food Chem. 2012. V. 134. № 3. P. 1601– 1606. https :// https :// doi.org/10.1016/j.foodchem.2012. 02.126
  39. Aripov V.S., Volkova N.V., Ilyichev A.A., Shcherba-| kov D.N. // Vavilov Journal of Genetics and Breeding. 2024. V. 28. № 2 . P. 249–257. https :// https :// doi.org/10.18699/vjgb-24-29
  40. Smith G.P., Scott J.K. // Methods Enzymol. 1993. V. 217. P. 228–257. https :// doi.org/10.1016/0076-6879(93)17065-D
  41. Shah K., Maghsoudlou P. // Br. J. Hosp. Med. 2016. V. 77. P. 98 – 101. https :// doi.org/10.12968/hmed.2016.77.7.C98
  42. Frens G. // Nat. Phys. Sci. 1973. V. 241. P. 20–22. https :// doi.org/10.1038/physci241020a0
  43. Guliy O.I., Zaitsev B.D., Burygin G.L., Karavaeva O.A., Fomin A.S., Staroverov S.A. // Ultrasound Med. Biol. 2020. V. 46. P. 1727–1737. https :// doi.org/10.1016/j.ultrasmedbio.2020.03.014
  44. Khlebtsov N.G ., Dykman L.A., Khlebtsov B.N. // Russ. Chem. Rev. 2022. V. 91. P. 1–29. https :// doi.org/10.57634/RCR5058
  45. Chang Y.-M., Chen Cammy K.-M. , Hou M.-H. // Int. J. Mol. Sci. 2012. V. 13. P. 3394–3413. https :// doi.org/10.3390/ijms13033394
  46. Bruque M.G., Rodger A., Hoffmann S.V., Jones N.C., Aucamp J., Dafforn T.R. et al. // Anal. Chem. 2024. V. 96. P. 15151−15159. https :// doi.org/10.1021/acs.analchem.4c01882

Дополнительные файлы

Доп. файлы
Действие
1. JATS XML
Скачать

© Российская академия наук, 2025

Согласие на обработку персональных данных

 

Используя сайт https://journals.rcsi.science, я (далее – «Пользователь» или «Субъект персональных данных») даю согласие на обработку персональных данных на этом сайте (текст Согласия) и на обработку персональных данных с помощью сервиса «Яндекс.Метрика» (текст Согласия).