Разработка и апробация количественной ПЦР-системы для изучения экспрессии эндосомальных рецепторов и цитозольных сенсоров нуклеиновых кислот у мышей
- Авторы: Олейник В.А.1,2, Плотникова М.А.1, Ёлшин Н.Д.1, Романовская-Романько Е.А.1, Клотченко С.А.1
-
Учреждения:
- Научно-исследовательский институт гриппа им. А.А. Смородинцева
- Санкт-Петербургский государственный технологический институт (технический университет)
- Выпуск: Том 25, № 1 (2025)
- Страницы: 90-100
- Раздел: Оригинальные исследования
- URL: https://medbiosci.ru/MAJ/article/view/312073
- DOI: https://doi.org/10.17816/MAJ637237
- EDN: https://elibrary.ru/PCBNIB
- ID: 312073
Цитировать
Аннотация
Обоснование. Врожденный иммунный ответ играет важнейшую роль в защите организма от вирусных патогенов, и важная его часть — паттерн-распознающие рецепторы, такие как толл- и RIG-I-подобные. Известно, что инвазия вирусов, в том числе вируса гриппа, приводит к активации внутриклеточных паттерн-распознающих рецепторов, таких как TLR3, TLR7, TLR8 и TLR9, локализованных в эндоплазматическом ретикулуме, эндосомах и лизосомах, а также MDA5 и RIG-I — цитозольных сенсоров вирусной РНК, не связанных с мембранами клетки. Экспрессия этих генов, адекватное их функционирование и регуляция имеет колоссальное значение для обеспечения адекватного иммунного ответа и формирования противовирусной защиты.
Цель — разработка и апробация количественной ПЦР-системы для оценки экспрессии генов TLR3, TLR7, TLR8, TLR9, MDA5, RIGI в тканях и органах мыши.
Материалы и методы. Изучение уровней экспрессии генов проводили методом полимеразной цепной реакции с обратной транскрипцией, используя разработанные панели праймеров и флуоресцентных зондов. Для апробации были выбраны самки инбредной линии мышей-альбиносов BALB/c в возрасте 8–10 нед., зараженные вирусом гриппа А/PR8/34 (H1N1).
Результаты. В ходе исследования была разработана тест-система на основе мультиплексной полимеразной цепной реакции для оценки экспрессии генов эндосомальных рецепторов TLR3, TLR7, TLR8, TLR9, а также цитозольных сенсоров MDA5 и RIG-I, эффективность амплификации которых составила 99 (TLR3), 106 (TLR7) и по 107% для остальных генов. Данная тест-система была применена для исследования уровней экспрессии TLRs и RLRs в тканях легких и селезенок мышей линии BALB/c при заражении вирусом гриппа А/PR8/34 (H1N1). Согласно полученным результатам, через 24 ч после инфицирования было показано достоверное изменение уровней мРНК TLR3, TLR7, TLR8, TLR9 и MDA5 в легких, но не в селезенках зараженных животных.
Заключение. Разработанная тест-система может быть применена для анализа экспрессии некоторых внутриклеточных PRRs, что открывает возможности для более глубокого изучения патофизиологических механизмов развития иммунного ответа.
Полный текст
Открыть статью на сайте журналаОб авторах
Вероника Андреевна Олейник
Научно-исследовательский институт гриппа им. А.А. Смородинцева; Санкт-Петербургский государственный технологический институт (технический университет)
Email: working.lyutik@gmail.com
ORCID iD: 0000-0003-3987-8817
лаборант-исследователь лаборатории гриппозных вакцин; студент
Россия, Санкт-Петербург; Санкт-ПетербургМарина Александровна Плотникова
Научно-исследовательский институт гриппа им. А.А. Смородинцева
Email: biomalinka@mail.ru
ORCID iD: 0000-0001-8196-3156
SPIN-код: 2986-9850
канд. биол. наук, старший научный сотрудник лаборатории векторных вакцин
Россия, Санкт-ПетербургНикита Дмитриевич Ёлшин
Научно-исследовательский институт гриппа им. А.А. Смородинцева
Email: nikita.yolshin@gmail.com
ORCID iD: 0000-0002-1050-5817
SPIN-код: 1878-0020
научный сотрудник лаборатории молекулярной вирусологии
Россия, Санкт-ПетербургЕкатерина Андреевна Романовская-Романько
Научно-исследовательский институт гриппа им. А.А. Смородинцева
Email: romromka@yandex.ru
ORCID iD: 0000-0001-7560-398X
SPIN-код: 1012-8043
канд. биол. наук, ведущий научный сотрудник лаборатории векторных вакцин
Россия, Санкт-ПетербургСергей Анатольевич Клотченко
Научно-исследовательский институт гриппа им. А.А. Смородинцева
Автор, ответственный за переписку.
Email: fosfatik@mail.ru
ORCID iD: 0000-0003-0289-6560
SPIN-код: 2632-6195
канд. биол. наук, заведующий лабораторией гриппозных вакцин
Россия, Санкт-ПетербургСписок литературы
- Sellge G., Kufer T.A. PRR-signaling pathways: learning from microbial tactics // Semin Immunol. 2015. Vol. 27, N 2. P. 75–84. doi: 10.1016/j.smim.2015.03.009
- Kouwaki, T., Nishimura, T., Wang, G., & Oshiumi, H. RIG-I-like receptor-mediated recognition of viral genomic RNA of severe acute respiratory syndrome coronavirus-2 and viral escape from the host innate immune responses // Frontiers in immunology. 2021. Vol. 12, P. 700926. doi: 10.3389/fimmu.2021.700926
- Hayden M.S., Ghosh S. NF-κB in immunobiology // Cell Res. 2011. Vol. 21, N 2. P. 223–244. doi: 10.1038/cr.2011.13
- Kayesh M.E.H., Kohara M., Tsukiyama-Kohara K. Recent insights into the molecular mechanisms of the toll-like receptor response to influenza virus infection // Int J Mol Sci. 2024. Vol. 25, N 11. P. 5909. doi: 10.3390/ijms25115909
- Kawai T., Akira S. The role of pattern-recognition receptors in innate immunity: update on Toll-like receptors // Nat Immunol. 2010. Vol. 11, N 5. P. 373–384. doi: 10.1038/ni.1863
- Zarember K.A., Godowski P.J. Tissue expression of human Toll-like receptors and differential regulation of Toll-like receptor mRNAs in leukocytes in response to microbes, their products, and cytokines // J Immunol. 2002. Vol. 168, N 2. P. 554–561. doi: 10.4049/jimmunol.168.2.554
- Masek T., Vopalensky V., Suchomelova P., Pospisek M. Denaturing RNA electrophoresis in TAE agarose gels // Anal Biochem. 2005. Vol. 336, N 1. P. 46–50. doi: 10.1016/j.ab.2004.09.010
- Nolan T., Hands R.E., Bustin S.A. Quantification of mRNA using real-time RT-PCR // Nat Protoc. 2006. Vol. 1, N 3. P. 1559–1582. doi: 10.1038/nprot.2006.236
- Mosley Y.Y.C., HogenEsch H. Selection of a suitable reference gene for quantitative gene expression in mouse lymph nodes after vaccination // BMC Res notes. 2017. Vol. 10. P. 1–7. doi: 10.1186/s13104-017-3005-y
- Influenza (Seasonal) [Электронный ресурс] // WHO. 2023 Oct 3. Режим доступа: https://www.who.int/news-room/fact-sheets/detail/influenza-(seasonal). Дата обращения: 12.03.2025.
- Thompson W.W., Shay D.K., Weintraub E., et al. Mortality associated with influenza and respiratory syncytial virus in the United States // JAMA. 2003. Vol. 289, N 2. P. 179–186. doi: 10.1001/jama.289.2.179
- Giri A., Sundar I.K. Evaluation of stable reference genes for qPCR normalization in circadian studies related to lung inflammation and injury in mouse model // Sci Rep. 2022. Vol. 12, N 1. P. 1764. doi: 10.1038/s41598-022-05836-1
- Wang J.P., Bowen G.N., Padden C., et al. Toll-like receptor–mediated activation of neutrophils by influenza A virus // Blood. 2008. Vol. 112, N 5. P. 2028–2034. doi: 10.1182/blood-2008-01-132860
- Koyama S., Ishii K.J., Kumar H., еt al. Differential role of TLR-and RLR-signaling in the immune responses to influenza A virus infection and vaccination // J Immunol. 2007. Vol. 179, N 7. P. 4711–4720. doi: 10.4049/jimmunol.179.7.4711
- Hornung V., Barchet W., Schlee M., Hartmann G. RNA recognition via TLR7 and TLR8 // Handb Exp Pharmacol. 2008. Vol. 183. P. 71–86. doi: 10.1007/978-3-540-72167-3_4
- Koh Y.T., Scatizzi J.C., Gahan J.D., et al. Role of nucleic acid–sensing tlrs in diverse autoantibody specificities and anti-nuclear antibody–producing B cells // J Immunol. 2013. Vol. 190, N 10. P. 4982–4990. doi: 10.4049/jimmunol.1202986
- Goffic R.L., Balloy V., Lagranderie M., et al. Detrimental contribution of the Toll-like receptor (TLR) 3 to influenza A virus-induced acute pneumonia // PLoS Pathog. 2006. Vol. 2, N 6. P. e53. doi: 10.1371/journal.ppat.0020053
- Majde J.A., Kapás L., Bohnet S.G., et al. Attenuation of the influenza virus sickness behavior in mice deficient in Toll-like receptor 3 // Brain Behav Immun. 2010. Vol. 24, N 2. P. 306–315. doi: 10.1016/j.bbi.2009.10.011
- Bhargavan B., Woollard S.M., Kanmogne G.D. Toll-like receptor-3 mediates HIV-1 transactivation via NFκB and JNK pathways and histone acetylation, but prolonged activation suppresses Tat and HIV-1 replication // Cell Signal. 2016. Vol. 28, N 2. P. 7–22. doi: 10.1016/j.cellsig.2015.11.005
- Xie J., Zhang S., Hu Y., et al. Regulatory roles of c-jun in H5N1 influenza virus replication and host inflammation // Biochim Biophys Acta. 2014. Vol. 1842, N 12 Pt A. P. 2479–2488. doi: 10.1016/j.bbadis.2014.04.017
- Meng D., Huo C., Wang M., et al. Influenza a viruses replicate productively in mouse mastocytoma cells (P815) and trigger pro-inflammatory cytokine and chemokine production through TLR3 signaling pathway // Front Microbiol. 2017. Vol. 7. P. 2130. doi: 10.3389/fmicb.2016.02130
- Zhang X., Li Z., Peng Q., et al. Epstein-Barr virus suppresses N6-methyladenosine modification of TLR9 to promote immune evasion // J Biol Chem. 2024. Vol. 300, N 5. P. 107226. doi: 10.1016/j.jbc.2024.107226
Дополнительные файлы
